Esha Flora Tissue Culture

Kultur jaringan merupakan salah satu teknik dalam perbanyakan tanaman secara klonal untuk perbanyakan masal. Teknik kultur jaringan ini juga merupakan salah satu teknik perbanyakan bagian tanaman berupa sel, jaringan ataupun organ dalam keadaan aseptik secara in vitro dengan menggunakan media buatan yang mengandung nutrisi lengkap, zat pengatur tumbuh (ZPT) serta ruang kultur, suhu dan pencahayaan yang terkontrol (Lestari,  2011).

·      Eksplan di cuci pada air mengalir selama 1 jam

·      Timbang fungisida, bakterisida dan detergen masing-masing 1 gram dalam 100 ml air.

·      Eksplan dicuci dengan detergen selama 10 menit, kemudian dibilas pada air mengalir hingga tidak terdapat busa pada eksplan.

·      Eksplan dicuci dengan fungisida dan bakterisida selama 1 jam, kemudian dibilas menggunakan air steril.

·      Masukan eksplan kedalam larutan antibiotik dengan konsentrasi antibiotik 10% atau 10 ml antibiotik per 90 ml air selama 1 jam dengan di beri aerator agar eksplan tetap hidup.

ü  Prosedur Sterilisasi dalam dan Inokulasi (Suhaimi, 2020)

·         Siapkan alat dan bahan

·         Masukan alat dan bahan ke dalam laminar dan nyalakan lampu serta blower

·         Eksplan dibilas dengan air steril, kocok selama 3 menit.

·         Eksplan dimasukkan kedalam HgCl 100 mg/100 ml, kemudian kocok selama 7 menit.

·         sEksplan kemudian dibilas kembali dengan air steril dan dikocok selama 3 menit.

·         Eksplan dimasukkan kedalam bayclin konsentrasi 15% selama 7 menit, bayclin 10% selama 7 menit, 5% bayclin 7 menit dengan ketentuan harus selalu dikocok.

·         Eksplan kemudian dicuci kembali dengan air steril dan dikocok selama 3 menit dengan pengulangan sebanyak 4 kali, kemudian eksplan dipindahkan kedalam cawan petri.

·         Masukkan pinset kedalam alkohol, kemudian bakar pinset pada api Bunsen, lalu di celupkan kedalam air steril.

·         Ambil botol berisi media, kemudian keluarkan air yang mungkin terdapat dalam botol diatas tisu, kemudian bakar mulut botol media pada api Bunsen.

·         Ambil pinset dan buka cawan petri untuk mengambil eksplan, kemudian tanam eksplan pada media.

·         Bakar kembali mulut botol, kemudian tutup kembali dengan plastik dan karet hingga benar-benar kencang, lakukan hingga semua eksplan tertanam.

·         Bereskan semua botol yang telah dipakai, kemudian keluarkan botol media yang telah berisi tanaman dari laminar.

·         Botol media berisi eksplan diberi alumunium foil, kemudian ditutup dengan plastik dan diikat dengan karet 3-5 lilitan.

·         Kemudian di lapisi dengan plastik wrap dan diberi label dengan keterangan nama eksplan, tanggal inisiasi, media yang digunakan dan nama penanam.

·         Semprot bagian dalam enkas dengan alkohol 70%, lap menggunakan tisu yang telah di semprotkan alkohol.

·         Masukkan semua alat dan bahan dengan menyemprot setiap alat dan bahan yang akan masuk kedalam enkas.

·         Semprot tangan sebelum masuk kedalam enkas, kemudian susun setiap alat dan bahan yang berada dalam enkas sesuai dengan posisinya.

·         Buka scapel dan pinset kemudian letakkan di dalam botol berisi alkohol 70%.

·         Diamkan enkas selama kurang lebih 1 jam sebelum melakukan subkultur.

·         Setelah satu jam, tangan disemprot dengan alkohol 70%  sebelum masuk.

·         Buka air steril dan tuangkan ke dalam cawan petri dan tutup botol selai, kemudian tambahkan betadhine.

·         Buka botol planlet, kemudian ambil planlet dengan pinset dan letakkan diatas cawan petri.

·         Potong planlet menggunakan scapel dengan ukuran 1-2 cm.

·         Siapkan botol media untuk subkultur, buka penutupnya dan kemudian tanam dengan menggunakan pinset.

·         Lap mulut botol dengan menggunakan kapas yang telah direndam betadhine.

·         Tutup kembali botol yang berisi tanaman yang telah di subkultur.

·         Setelah semua tanaman di subkultur, kemudian keluarkan semua alat dan bahan dari enkas, setelah itu enkas disemprot kembali dengan alkohol 70%

·         Timbang fungisida dan bakterisida masing-masing 1 gram, kemudian larutkan dalam 2 liter air.

·         Keluarkan tanaman atau planlet dari botol kultur, kemudian rendam dalam air bersih dan bersihkan hingga bersih.

·         Kemudian rendam planlet pada larutan fungisida dan bakterisida selama 15 menit

·         Siapkan media berupa arang sekam dan cocopeat dengan perbandingan 1:1 sebagai media pertumbuhan

·         Masukkan sterofoam ke dalam gelas plastik yang telah dilubangi, kemudian diisi dengan media yang telah dibuat, ratakan media dengan tangan.

·         Angkat dan keringkan planlet pada Koran, tunggu hingga cukup kering.

·         Tanam planlet pada media aklimatisasi, kemudian tutup bagian atas dengan menggunakan gelas plastik lainnya dan ditutup dengan menggunakan plastik wrap.